FRECUENCIA DE INMERSIÓN Y VOLUMEN DE MEDIO DE CULTIVO PARA LA FORMACIÓN DE MICROCORMOS DE GLADIOLO EN BIORREACTORES DE INMERSIÓN TEMPORAL
Keywords:
Temporary Immersion System, Massive MicropropagationAbstract
With the purpose of developing a protocol for the massive reproduction of microcorms of gladiolus (Gladiolus grandiflorus Hort. cv Amsterdam) in a temporary immersion bioreactor (BIT®), the effect of different immersion frequencies (4, 8 and 12 h) and six variants of the volume of culture medium (27.7, 33.3, 41.6, 55.5, 83.3, 166.6 mL, per explant) was determined. In each case, a completely randomized experimental design was used with four repetitions per treatment. After 110 days of incubation, the number of shoots per propagule, shoot length, number of roots, root length, number, diameter and weight of microcorms was counted. The results showed that with the immersion frequency every 4 hours and with 55.6 mL of culture medium per explant, 34.8 microcorms per explant were obtained as the best result.
References
Aguirre G, Pierre J, Leigue L. 2016. Aplicación del cultivo de tejidos en la multiplicación y conservación de los recursos fitogenéticos. Universidad Mayor de San Simón. Cochabamba, Bolivia.
Albany NR, Vilchez JA, León S, Nava AR, Martínez LJ, Molina MA. 2015. Medios de cultivo líquidos: un avance para la micropropagación comercial de zábila (Aloe barbadensis Mill.). Revista Colombiana de Biotecnología 17: 24-31. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote. V17n1.50669
Albarrán J, Salazar E, Trujillo I, Vegas A, González A, Díaz A, Vallejo E, Castro L, Torrealba A, Silva A. 2014. Biorreactores de inmersión temporal para la propagación masiva de plantas. IINIA Divulga 28: 2-8.
Alvarenga S, Salazar T. 2015. Micropropagación masiva de Stevia rebaudiana Bertoni en sistemas de inmersión temporal. Cultivos Tropicales 36: 50-57.
Basail M, Medero V, Torres Y, Jiménez A, López J, Santos A, Raya A, Bauta M, Beovides Y, Gutiérrez Y. 2015. Multiplicación del cultivar de plátano ‘CEMSA ¾’ (AAB) en Sistema de Inmersión Temporal. Agricultura Tropical 1: 32-41.
Businge E, Trifonova A, Schneider C, Rödel P, Egertsdotter U. 2017. Evaluation of a new temporary immersion bioreactor system for micropropagation of cultivars of eucalyptus, birch and fir. Forests 8: 196. https://doi. org/10.3390/f8060196
Cañal MJ, Rodríguez R, Fernández B, Sánchez-Tames R, Majada JP. 2001. Fisiología del cultivo in vitro. Biotecnología Vegetal 1: 3-9.
De Feria M, Chávez M, Quiala E, Jiménez E. 2003. Efecto de la densidad de inóculo y la frecuencia de inmersión en la propagación in vitro de Psidium guajava cv. Enana roja en sistemas de inmersión temporal. Biotecnología Vegetal 3: 149-154.
Escalona M, Aragón CA, Capote I, Pina D, Ceja I, Rodríguez R, Debergh P. 2007. Physiology of effects of temporary immersion bioreactor (TIB) on micropropagated plantlets. Acta Horticulturae 748: 95-101. https://doi. org/10.17660/ActaHortic.2007.748.9
Etienne H, Berthouly M. 2002. Temporary immersion systems in plant micropropagation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 69: 215-231. https://doi. org/10.1023/A:1015668610465
García-Ramírez Y, González-González M, Torres-García S, Freire-Seijo M, Pérez M, Trujillo Á, Rivero L. 2016. Efecto de la densidad de inóculo sobre la morfología y fisiología de los brotes de Bambusa vulgaris Schard. ex Wendl cultivados en Sistemas de Inmersión Temporal. Biotecnología Vegetal 16: 231-237.
Latawa J, Shukla MR, Saxena PK. 2016. An efficient temporary immersion system for micropropagation of hybrid hazelnut. Botany 94: 1-8. https://doi.org/10.1139/ cjb-2015-0111
Lian ML, Piao X-C, Park S-Y. 2014. Mass production of Lilium bulblets in bioreactors. En: Paek K-Y, Niranjana H, Zhong J-J, editores. Production of Biomass and Bioactive Compounds Using Bioreactor Technology. Dordrecht, Springer. P. 390-415. https://doi. org/10.1007/978-94-017-9223-3_16
Mendonça EG, Stein VC, De Carvalho HH, Santos BR, Beijo LA, Paiva LV. 2016. The use of continuous, temporary immersion bioreactor system and semisolid culture medium for the production of Eucalyptus camaldulensis clones. Ciência Florestal 26: 1211-1224.
Mosqueda O, Escalona MM, Da Quinta MA. 2016. Efecto del tiempo de cultivo y volumen de medio de cultivo por explante en la multiplicación de Gerbera jamesonii en Sistemas de Inmersión Temporal. Biotecnología Vegetal 16: 3-11.
Murashige T, Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiology Plantarum 15: 473-497. https://doi. org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Othmani A, Bayoudh Ch, Sellemi A, Drira N. 2017. Temporary immersion system for date palm microprogation. En: Al-Khayri J, Jain S, Johnson D, editores. Date Palm Biotechnology Protocols Volume I. Methods in Molecular Biology. Nueva York, Humana Press. P. 240- 249. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7156-5_20
Oviedo-Pereira D, Alvarenga S, Evangelista S, Sepúlveda G, Rodriguez-Monroy M. 2015. Microprogación de Stevia rebaudiana Beroni, un cultivo promisorio para México. BioTecnología 19: 14-27.
Rocano MN, Villena PG, Peña DF. 2017. Evaluación de los sistemas de cultivo semisólido y BIT en la multiplicación in vitro de Juglans neotropica. MASKANA 8: 103- 109. https://doi.org/10.18537/mskn.08.01.09
Rosales C, Brenes J, Salas K, Arce-Solano S, AbdelnourEsquivel A. 2018. Micropropagation of Stevia rebaudiana in temporary immersion systems as an alternative horticultural production method. Revista Chapingo Serie Horticultura 24: 69-84. https://doi.org/10.5154/r. rchsh.2017.08.028
Ruffoni B, Savona M. 2005. The Temporary Immersion System (T.I.S.) for the improvement of micropropagatión of ornamental plants. Acta Horticulturae 683: 445-449. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2005.683.59
Ruffoni B, Savona M, Barberini S. 2012. Biotechnological support for the development of new Gladiolus hybrids. Floriculture and Ornamental Biotechnology 1: 45-52.
SAS Institute. 2002. SAS/STAT Version 9.00. User´s Guide. SAS Institute Inc. Cary, Estados Unidos.